MET 14号外显子跳跃

发布时间 2024-01-12 10:38:36作者: xiaojikuaipao

 

转自 https://mp.weixin.qq.com/s/nsPxvD8GAVwuh3AkS7CS2w 

MET 14号外显子跳跃突变难以识别?阅读本文带你明辨是非

 市场部 绘真医讯 2022-04-26 17:16 发表于江苏


图片

在我们认真阅读基因检测报告时,相信会经常看到错义突变、移码突变、截短突变等耳熟能详的基因变异类型。然而,当初次发现变异类型为MET 14号外显子跳跃突变MET exon 14 skipping,下称MET 14跳突)的时候,你很可能会感到很新颖,基因还有跳跃突变呢?然后一连串的问题,陷入茫然,跳跃突变是啥啊?可以用靶向药吗...


图片

 

 

不要着急,今天咱们就一起揭秘这个听起来生涩的MET 14跳突,如何在众多的MET变异中对它明辨是非?鉴于介绍内容较多,咱们不妨先列个问题提纲再细细道来:

 

  • 一、什么是MET 14号外显子跳跃突变?

  • 二、MET 14号外显子跳跃突变为什么导致癌症?

  • 三、MET 14跳突的多种变异名称如何解释?

  • 四、MET 14号外显子跳跃突变发生的位置有哪些?

  • 五、如何快速辨认MET 14跳突?

  • 六、MET 14跳突各类型发生比例如何?

  • 七、如何精准全面地检测MET 14号外显子跳突?

  • 八、不同检测平台对MET 14跳突的检测结果有差异吗?

  • 九、MET 14跳突的肺癌患者有哪些靶向药物?

 

一、什么是MET 14号外显子跳跃突变?

MET 14跳突是由MET基因突变导致的特殊结构变异,咱们了解下DNA的结构,DNA分子是由编码氨基酸的外显子(exon)和非编码氨基酸的内含子(intron)交错组成。DNA在转录翻译成氨基酸时,规则性地将内含子剪去,而各外显子连接成连续的mRNA分子进行氨基酸的翻译(图1a)[1-2]。这个过程中,mRNA正常剪接受识别位点调控,包括外显子和内含子交接的“剪接区域”以及内含子上的多个位点都调控mRNA的正常翻译。一旦这些区域发生突变异常,mRNA的正常剪接会受到影响,导致蛋白翻译差错。所以不难理解,MET 14跳突就是由于MET基因转录调控的关键识别区域发生了异常突变,导致MET转录时mRNA跳过了14号外显子,形成13号外显子和15号外显子直接相连而14号外显子发生丢失的现象(图1b[2]。


图片图1.MET 14跳突发生和致病机制图示

 

显而易见,引起外显子跳跃的因素终归还是基因突变,只不过突变的位置是关键:剪接区域?内含子上?但的确是致癌因素之一,广泛存在于肿瘤患者中。

二、MET 14号外显子跳跃突变为什么导致癌症?

MET基因是常见的原癌基因,突变、扩增等激活突变均能导致癌症,而这14号外显子跳跃突变如何致癌呢?这就要从MET 14号外显子的功能说起。
事实上,MET 基因第1003位置的酪氨酸(Y1003)残基的区域能与E3泛素连接酶CBL的结合,行使MET蛋白降解功能,保障细胞正常增殖(图1c,2A)。而MET 14跳突外显子丢失就会使MET蛋白无法与CBL结合,这样MET蛋白持续激活下游信号通路,促进肿瘤细胞快速增殖和发展(图1d,2B)[2-3]。事实上,不仅MET 14跳突,只要涉及Y1003区域的突变都会导致MET蛋白降解减少。但这些外显子深处的突变并不能导致MET 14跳突。所以总结下,MET 14号外显子和周围内含子中的多个变异区域都可能导致MET功能异常而激活肿瘤信号通路,变成肿瘤的“帮凶”,而由于RNA剪接异常造成“MET 14号外显子跳跃突变”较为常见。

图片

图2. MET 14号外显子跳跃突变信号调控机制

 

那么问题来了,是不是只要是MET基因14号外显子及其周围的突变都属于MET 14跳突?命名上有什么特别之处?先别激动,咱们要介绍辨别信息和方法了。

 

三、MET 14跳突的多种变异名称如何解释?

首先,了解下基因变异的命名规则-HGVS(human genome variation society)[4],相信这也是各基因检测报告变异命名的参考标准。对于报告中常见的“c.”和“p.”,两者是对同一变异在DNA序列和氨基酸序列的分别命名,实为对应关系。“c.” 描述编码DNA(coding DNA)序列的变异,“p.”描述蛋白质(protein)氨基酸序列的变异;以参考序列的首位碱基/氨基酸进行计算,变异中的数字则是对应的具体位置,如c.3028G>A即表示MET基因编码序列的3028位核苷酸由原先的G突变成A,对应的蛋白层面变化则是p.Asp1010Asn,表示氨基酸序列第1010位天冬酰胺取代了原先的天冬氨酸(图3)。而对于c.2888-16_2888-1del和c.3028+3A>G则是外显子上游(-)和下游(+)的内含子区域内的变异,内含子为非编码氨基酸区域,所以偶然见到这种有+和-的DNA变异描述,无须困惑,内含子突变嘛,没有氨基酸变化是正常的。

 

图片

图3以MET基因举例内含子和外显子变异命名

 

四、MET 14号外显子跳跃突变发生的位置有哪些?

我们先知晓在14号外显子周围的4个功能区域(剪接供体区域、剪接受体区域、分支位点、多聚嘧啶区域),因为MET基因变异只要影响到这4个功能区域就会导致MET 14跳突(图4)[5-6]。还要明确14号外显子上第一个和最后一个碱基位点命名(c.2888和c.3028),因为几乎所有的MET 14跳突的命名都是以这两个位点(数字)为基准(MET转录本号:NM_000245)。例如内含子中的突变:c.2888-16_2888-1del和c.3028+3A>G。当然,MET 14跳突的变异命名也因参考的基因转录本不同而异,当你发现c.2942和c.3082为基准的命名时,大概率MET转录本号是NM_001127500.3,若确认属实后,依然适用判读[7]。

 

图片

图4. MET 14跳突功能区域和真实位点检出(综合[6]和[8]研究作图)

 

看得出,这4个功能区位置上大体分为两类:一类是位于14号外显子首末两端经典剪接区域:剪接供体区域和剪接受体区域;另一类是位于13号内含子较深处的的分支位点和多聚嘧啶位点。结合图4展开来说[5-9]:1)剪接供体区域(splice donor, SD):SD位于exon14与intron14交接的剪接区域(c.3028或c.3082前后;剪接供体区域碱基发生突变(c.3028,c.3028+1,c.3028+2,c.3028+3等),或者覆盖该区域的变异(c.3026_c.3028+7del,c.3028_c.3028+3del等)都能导致MET 14跳突发生。其中,外显子内部的c.3027,c.3028对应的氨基酸为p.X1009和p.D1010,看到这种氨基酸的变异可直接判定MET 14跳突。

 

2)剪接受体区域(splice acceptor, SA):SA位于exon14与intron13交接的剪接区域(c.2888或c.2942前后;剪接受体区域碱基发生突变(c.2888-1,c.2888-2、c.2888等),或者覆盖该区域的变异(c.2888-5_2911del,c.2888-14_2888-5del,c.2888-18_2888-6del)等都能导致MET 14跳突发生。其中,c.2888位于MET 14号外显子区域,对应的氨基酸为p.X963。

 

3)分支位点(Branch Site,BS):BS位于13号内含子内部,为14号外显子上游29bp的A碱基位点(c.2888-29),若该位点发生突变或者被其他片段变异所覆盖(c.2888-35_ 2888-17del),可能导致MET 14跳突。

 

4) 多聚嘧啶位点(Poly-pyrimidine tract,PPT):PPT同样位于13号内含子内部,为14号外显子上游9bp至24bp的区域(c.2888-24_2888-9),若MET基因小片段缺失片段覆盖或涉及PPT区域(c.2888-28_2888-14del,c.2888-27_2888-12del),可能导致MET 14跳突。

 

除此之外,位于14号外显子内部的多个错义突变也能致癌,多为MET第1002、1003、1004位氨基酸,但它们并不导致MET 14跳突。所以除了MET 14号外显子跳跃突变外,也有必要进一步确认是否为外显子上激活突变。

 

五、如何快速辨认MET 14跳突?

重点来了,对于报告中即将看到的MET基因突变?先别激动,捋一下MET 14跳突辨认步骤。


为更贴合实际情况,列举几份报告涉及了不同类型的MET 14跳突供参考:

图片

图5. 绘真医学MET 跳突检出报告示例

 

如何快速辨认MET 14跳突?

一看内含子/外显子号,排除13和14之外的变异:

intron 表示内含子,exon为外显子,通常MET变异位于13号内含子(intron 13)/14号外显子(exon 14)/14号内含子(intron 14)上才会导致MET 14跳突,其它内含子/外显子无需考虑!

 

二看位点变异,“数字”是否涉及功能区位点:

这里务必记住两个关键词:c.2888和c.3028(参考转录本:NM_000245)。这是位于c.2888和c.3028位点及周围的变异的标志物。这里只需看变异是不是剪接受体位点SA:c.2888,c.2889,c.2888-1/-2/-3剪接供体位点SD:c.3028,c.3027,c.3028+1/+2/+3,多聚嘧啶位点PPT:c.2888-24_c.2888-9、分支位点BS:c.2888-29当你看到c.2942和c.3082时,先确认转录本,若是NM_001127500.3,可替代c.2888和c.3028的作用,也有用这个转录本的报道[7]。

 

还有很多MET 14跳突都是小片段的缺失/缺失插入(del/indel),以“_”为标志,这些变异区间若覆盖或涉及上述功能位点,也会导致MET 14跳突,例如c.2888-35_ 2888-17del(涉及BS和PPT)、c. 2888-27_2901del(PPT和SA)、c.2888-10_ 2909delinsTCA(SA)或c.3028_ 3028+3del(SD)、c.3028+1_3028+9del(SD)、c.3028_3028+17delinsC(SD)。

 

三看非14跳突变异,14外显子内部致病变异

前面三步是判定MET 14跳突步骤,其它14号外显子内部的1002、1003、1004位氨基酸激活变异通常表述为p.Y1003X、p. R1004X和p.D1002X(X代表不同氨基酸)。再确认这些位点突变来判定非MET 14跳突类型。

 

六、MET 14跳突各类型发生比例如何?

既往研究表明[7.10],MET 14跳突在中国NSCLC患者中的总体比例为1%-2.62%,发生率因病理亚型而异,在腺癌中约为1.0%-2.6%,鳞癌中约为1.5%-4.8%,而在肉瘤样癌中则达到10.5%-31.8%。

 

一项大型临床研究在60244晚期NSCLC患者中检出了1592例MET 14跳突的患者[11],携带了共1599种MET 14跳突不同类型,其中组织和血液的检出率分别为2.4%(1458/60244)和1.8%(134/8975)。不同功能区域的MET 14跳突的突变数量和类型均有差别(图7):5'端剪接供体区域SD(31%)、D1010(22%)、多聚嘧啶序列PT(17%)、5 '端多位点变异(13%)、3 '端多位点变异(12%)、3'端剪接受体SA(2.3%)、Y1003位点(2.3%)和整个外显子缺失(0.44%)。进一步分析发现,在经典剪接3'SA和5'SD位点上,突变类型主要是碱基替换(94%和75%),而14号外显子的PT区域、5多位点和3多位点的突变方式以indel为主。

 

图片图6. 不同区域MET 14跳突在组织和血液样本检出情况[11]

 

因此,MET 14跳突类型多样并且功能区域覆盖广泛,多数变异位于测序难度较大的内含子区域,血液检测可能存在一定的漏检率,精准检出MET 14跳突似乎是一项挑战。

 

 

七、如何精准全面地检测MET 14号外显子跳突?

目前,MET 14跳突的检测方法包括NGS、RT-PCR和Sanger测序,NGS因检测变异类型多、覆盖范围广是NCCN和CSCO指南推荐的检测方法。NGS检测进一步分为DNA水平的测序和RNA水平的测序。2020年哥伦比亚医学中心一项研究用NGS-DNA在644例肺腺癌患者检测到16例 (2.5%)MET 14跳突的患者,而当再使用NGS-RNA检测,结果在DNA检测为阴性的样本中另外检出了9例携带 MET 14跳突的样本。究其原因,发现DNA水平测序未覆盖13号内含子剪切受体位点,导致遗漏部分阳性变异[12]。有研究分析了DNA和RNA检测MET 14跳突结果,发现RNA层面的NGS检测MET 14跳突的检出率为4.2%(17/404),显著高于DNA层面的检出率1.3%(11/856)[13]。在两种方法同时检测的286例样本中,RNA检出10例阳性,其中6例在DNA中并未检出。主要是扩增探针设计范围有限或难以满足高质量测序,无法捕获关键突变位点。表明DNA层面检测MET 14跳突时,需全面考虑是否覆盖所有可能发生区域和类型,测序探针的合理设计尤为重要。

 

图片图7. NGS-DNA和NGS-RNA检测MET 14跳突的区别[12]

 

由于MET跳突多发生于DNA内含子区域,而内含子区域涵盖大量的重复或高GC序列导致NGS-DNA测序不佳。基于RNA水平的NGS检测MET 14跳突可能比DNA水平更加全面,但RNA检测需要严苛的组织保存和提取条件,易降解性也是限制NGS-RNA检测的痛点。所以,NGS-DNA和NGS-RNA检测MET 14跳突各具优劣势,最佳方式采取优势互补的双组学检测相信能全面、精准地检出MET 14跳突。

 

八、不同检测平台对MET 14跳突的检测结果有差异吗?

MET 14跳突挑战不仅存在于不同测序技术之间,其实不同的NGS平台在MET 14跳突检测时也会出现不同的检测结果,我们尤其需要关注的是假阳性。2021年权威杂志《Journal of Thoracic Oncology 》就发表一篇研究报道[14]。

 

研究采用Oncomine DxTT(FDA批准的NGS肺癌伴随诊断产品,Ion Torrent平台),在50例样本中检出26例为MET 14跳突阳性,24例为阴性。后续又使用了Archer MET(日本获批的MET抑制剂Tepotinib的伴随诊断试剂盒,Illumina MiSeq平台[15])和RNA层面的RT-PCR技术对这50例样本进行验证,确认出Oncomine DxTT的结果中有8例样本为假阳性,而Archer MET和RT-PCR所有检测结果是一致的。分析发现这8例样本中有3例为测序深度太少导致假阳性,5例是由于14号外显子剪接供体区域存在的重复碱基TTTT导致Ion Torrent测序的假阳性(4个T测成3个T)(图9),由于Ion Torrent平台测序这段重复碱基时少识别一个T,表现为剪接供体移码突变,误认为是MET 14跳突“阳性”。这也是目前Ion Torrent平台测序检测序列准确性的技术瓶颈[16]。

 

图片图8. 三种平台检测MET 14跳突结果及Oncomine DxTT检出差异性原因[14]

 

目前,临床上对MET14跳突的检测报道多集中于假阴性结果,而该研究证明了假阳性也客观存在。我们发现,存在多种影响MET 14跳突测序的不确定因素,包括基因层面的,技术层面的等等,这也是MET 14跳突检测在不同平台或样本间存在广泛差异性的原因。不同的检测平台和技术各具优势,相信随着技术的完善,会有更多的准确性高,覆盖面全的MET 14跳突技术和产品被挖掘。

 

 

九、MET 14跳突的肺癌患者有哪些靶向药物?

现阶段,克唑替尼、Capmatinib、Tepotinib赛沃替尼等多种MET抑制剂已经在MET 14跳突的NSCLC患者中取得了良好的抗肿瘤效果[17]。近两年,Capmatinib和Tepotinib陆续获得FDA批准上市,而赛沃替尼也于2021年被NMPA批准上市,中国MET 14跳突患者迎来了首款获批的MET抑制剂。目前,MET 14跳突检测已被纳入国内外各大指南的推荐用以指导靶向治疗。最新NCCN非小细胞肺癌临床实践指南(2022.v3版)推荐转移性NSCLC患者检测MET 14跳突,阳性患者一线治疗可选择Capmatinib、Tepotinib或克唑替尼(特殊情况下)。

 

图片

图9. 2022 v3版NCCN指南推荐MET 14跳突患者一线治疗

 

CSCO指南对于MET 14跳突阳性NSCLC患者的一线治疗,III级推荐Capmatinib、Tepotinib;对于未经靶向治疗的后线患者,II级推荐赛沃替尼,III级推荐Capmatinib、Tepotinib的治疗。

 

图片

图10. CSCO指南推荐MET 14跳突患者一线及后线治疗

 

除此之外,《非小细胞肺癌分子病理检测临床实践指南2021版》已明确将MET 14跳突与EGFR、ALK、ROS1同等列为NSCLC患者的必检基因[18]。随着MET抑制剂的陆续获批,不仅是MET 14跳突,包括MET扩增都已然成为NSCLC的靶向治疗领域的研究热点,为更好地了解临床前沿进展,在此为您找来MET抑制剂在MET变异的NSCLC患者中的最新临床研究[19]。

 

图片

图11. 不同MET抑制剂在MET突变患者中的临床研究[19]

 

精准治疗,检测先行!在推行肿瘤靶向治疗的今天,全面准确的基因检测结果是患者能否获益于靶向治疗的先决条件,期待会有更多新兴的MET基因检测平台和方法被开发,实现MET基因突变的肿瘤患者更多地获益于分子检测和药物治疗。

 

参考文献:[1]  A C D , Frédéric Leprêtre PhD b,  Fabienne Escande A , et al. Optimization of Routine Testing for MET Exon 14 Splice Site Mutations in NSCLC Patients[J]. Journal of Thoracic Oncology, 2018, 13( 12):1873-1883.[2] A, Drilon. MET Exon 14 Alterations in Lung Cancer: Exon Skipping Extends Half-Life[J]. Clinical Cancer Research, 2016, 22(12).[3]  Subramanian J, Tawfik O. Detection of MET exon 14 skipping mutations in non-small cell lung cancer: overview and community perspective. Expert Rev Anticancer Ther. 2021 Aug;21(8):877-886.[4] den Dunnen JT. Describing Sequence Variants Using HGVS Nomenclature. Methods Mol Biol. 2017;1492:243-251.[5] Shah R ,  D  Alex,  Xu Z . MET Exon 14 Skipping Alterations in Non-small Cell Lung Carcinoma—Current Understanding and Therapeutic Advances[J]. Oncology & Hematology Review (US), 2021, 16(2):100.[6] Fujino T ,  Suda K ,  Mitsudomi T . Lung Cancer with MET exon 14 Skipping Mutation: Genetic Feature, Current Treatments, and Future Challenges[J]. Lung Cancer: Targets and Therapy, 2021, Volume 12:35-50.[7] Tong JH, Yeung SF, Chan AW, et,al . MET Amplification and Exon 14 Splice Site Mutation Define Unique Molecular Subgroups of Non-Small Cell Lung Carcinoma with Poor Prognosis. Clin Cancer Res. 2016 Jun 15;22(12):3048-56.[8] MET Exon 14 Mutations in Non-Small-Cell Lung Cancer Are Associated With Advanced Age and Stage-Dependent MET Genomic Amplification and c-Met Overexpression[J]. Journal of Clinical Oncology, 2016.[9] Tong JH, Yeung SF, Chan AW, Chung LY, Chau SL, Lung RW, Tong CY, Chow C, Tin EK, Yu YH, Li H, Pan Y, Chak WP, Ng CS, Mok TS, To KF. MET Amplification and Exon 14 Splice Site Mutation Define Unique Molecular Subgroups of Non-Small Cell Lung Carcinoma with Poor Prognosis. Clin Cancer Res. 2016 Jun 15;22(12):3048-56. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-2061. Epub 2016 Feb 4. PMID: 26847053.[10]  Baihua Zhang, Yu Xia, Jiujin Zhang, Jin Yu, Min Chen, Wei Yao, Juan Zhao, Jiqiang He, Tony S. K. Mok, and Kai Wang .Characterization of MET exon 14 skipping in Chinese non-small cell lung cancer (NSCLC) patients. Journal of Clinical Oncology 2020 38:15_suppl, e21525-e21525[11] Lee JK, Madison R, Classon A, Gjoerup O, Rosenzweig M, Frampton GM, Alexander BM, Oxnard GR, Venstrom JM, Awad MM, Schrock AB. Characterization of Non-Small-Cell Lung Cancers With MET Exon 14 Skipping Alterations Detected in Tissue or Liquid: Clinicogenomics and Real-World Treatment Patterns. JCO Precis Oncol. 2021 Aug 25;5:PO.21.00122.[12]  Jurkiewicz M ,  Saqi A ,  Mansukhani M M , et al. Efficacy of DNA versus RNA NGS-based Methods in MET Exon 14 skipping mutation detection[J]. Journal of Clinical Oncology, 2020, 38(15_suppl):9036-9036.[13]  Davies,  Kurtis D , Lomboy, et al. DNA-Based versus RNA-Based Detection of MET Exon 14 Skipping Events in Lung Cancer[J]. Journal of Thoracic Oncology, 2019, 14( 4):737-741.[14]  Teishikata T, Shiraishi K, Shinno Y, Kobayashi Y, Kashima J, Ishiyama T, Yoshida T, Mori T, Yatabe Y. An Alert to Possible False Positives With a Commercial Assay for MET Exon 14 Skipping. J Thorac Oncol. 2021 Dec;16(12):2133-2138.[15]  Yatabe, Yasushi & Goto, Koichi & Matsumoto, et,al. METex14 Skipping Testing Guidance for Lung Cancer Patients: The Guidance from the Biomarker Committee, the Japan Lung Cancer Society. Haigan. 61. 361-370. 10.2482/haigan.61.361.[16] Carapito R, Radosavljevic M, Bahram S. Next-generation sequencing of the HLA locus: methods and impacts on HLA typing, population genetics and disease association studies. Hum Immunol. 2016;77:1016–1023.[17] Shah R ,  D  Alex,  Xu Z . MET Exon 14 Skipping Alterations in Non-small Cell Lung Carcinoma—Current Understanding and Therapeutic Advances[J]. Oncology & Hematology Review (US), 2021, 16(2):100.[18] 中华医学会病理学分会, 国家病理质控中心, 中华医学会肿瘤学分会肺癌学组,等. 非小细胞肺癌分子病理检测临床实践指南(2021版)[J]. 中华病理学杂志, 2021, 50(4):10.[19]  Hamilton G, Rath B. Met inhibitors in the treatment of lung cancer: the evidence to date. Expert Opin Pharmacother. 2022 Apr 13:1-11.

 

MET 14号外显子跳跃突变难以识别?阅读本文带你明辨是非

 市场部 绘真医讯 2022-04-26 17:16 发表于江苏


图片

在我们认真阅读基因检测报告时,相信会经常看到错义突变、移码突变、截短突变等耳熟能详的基因变异类型。然而,当初次发现变异类型为MET 14号外显子跳跃突变MET exon 14 skipping,下称MET 14跳突)的时候,你很可能会感到很新颖,基因还有跳跃突变呢?然后一连串的问题,陷入茫然,跳跃突变是啥啊?可以用靶向药吗...


图片

 

 

不要着急,今天咱们就一起揭秘这个听起来生涩的MET 14跳突,如何在众多的MET变异中对它明辨是非?鉴于介绍内容较多,咱们不妨先列个问题提纲再细细道来:

 

  • 一、什么是MET 14号外显子跳跃突变?

  • 二、MET 14号外显子跳跃突变为什么导致癌症?

  • 三、MET 14跳突的多种变异名称如何解释?

  • 四、MET 14号外显子跳跃突变发生的位置有哪些?

  • 五、如何快速辨认MET 14跳突?

  • 六、MET 14跳突各类型发生比例如何?

  • 七、如何精准全面地检测MET 14号外显子跳突?

  • 八、不同检测平台对MET 14跳突的检测结果有差异吗?

  • 九、MET 14跳突的肺癌患者有哪些靶向药物?

 

一、什么是MET 14号外显子跳跃突变?

MET 14跳突是由MET基因突变导致的特殊结构变异,咱们了解下DNA的结构,DNA分子是由编码氨基酸的外显子(exon)和非编码氨基酸的内含子(intron)交错组成。DNA在转录翻译成氨基酸时,规则性地将内含子剪去,而各外显子连接成连续的mRNA分子进行氨基酸的翻译(图1a)[1-2]。这个过程中,mRNA正常剪接受识别位点调控,包括外显子和内含子交接的“剪接区域”以及内含子上的多个位点都调控mRNA的正常翻译。一旦这些区域发生突变异常,mRNA的正常剪接会受到影响,导致蛋白翻译差错。所以不难理解,MET 14跳突就是由于MET基因转录调控的关键识别区域发生了异常突变,导致MET转录时mRNA跳过了14号外显子,形成13号外显子和15号外显子直接相连而14号外显子发生丢失的现象(图1b[2]。


图片图1.MET 14跳突发生和致病机制图示

 

显而易见,引起外显子跳跃的因素终归还是基因突变,只不过突变的位置是关键:剪接区域?内含子上?但的确是致癌因素之一,广泛存在于肿瘤患者中。

二、MET 14号外显子跳跃突变为什么导致癌症?

MET基因是常见的原癌基因,突变、扩增等激活突变均能导致癌症,而这14号外显子跳跃突变如何致癌呢?这就要从MET 14号外显子的功能说起。
事实上,MET 基因第1003位置的酪氨酸(Y1003)残基的区域能与E3泛素连接酶CBL的结合,行使MET蛋白降解功能,保障细胞正常增殖(图1c,2A)。而MET 14跳突外显子丢失就会使MET蛋白无法与CBL结合,这样MET蛋白持续激活下游信号通路,促进肿瘤细胞快速增殖和发展(图1d,2B)[2-3]。事实上,不仅MET 14跳突,只要涉及Y1003区域的突变都会导致MET蛋白降解减少。但这些外显子深处的突变并不能导致MET 14跳突。所以总结下,MET 14号外显子和周围内含子中的多个变异区域都可能导致MET功能异常而激活肿瘤信号通路,变成肿瘤的“帮凶”,而由于RNA剪接异常造成“MET 14号外显子跳跃突变”较为常见。

图片

图2. MET 14号外显子跳跃突变信号调控机制

 

那么问题来了,是不是只要是MET基因14号外显子及其周围的突变都属于MET 14跳突?命名上有什么特别之处?先别激动,咱们要介绍辨别信息和方法了。

 

三、MET 14跳突的多种变异名称如何解释?

首先,了解下基因变异的命名规则-HGVS(human genome variation society)[4],相信这也是各基因检测报告变异命名的参考标准。对于报告中常见的“c.”和“p.”,两者是对同一变异在DNA序列和氨基酸序列的分别命名,实为对应关系。“c.” 描述编码DNA(coding DNA)序列的变异,“p.”描述蛋白质(protein)氨基酸序列的变异;以参考序列的首位碱基/氨基酸进行计算,变异中的数字则是对应的具体位置,如c.3028G>A即表示MET基因编码序列的3028位核苷酸由原先的G突变成A,对应的蛋白层面变化则是p.Asp1010Asn,表示氨基酸序列第1010位天冬酰胺取代了原先的天冬氨酸(图3)。而对于c.2888-16_2888-1del和c.3028+3A>G则是外显子上游(-)和下游(+)的内含子区域内的变异,内含子为非编码氨基酸区域,所以偶然见到这种有+和-的DNA变异描述,无须困惑,内含子突变嘛,没有氨基酸变化是正常的。

 

图片

图3以MET基因举例内含子和外显子变异命名

 

四、MET 14号外显子跳跃突变发生的位置有哪些?

我们先知晓在14号外显子周围的4个功能区域(剪接供体区域、剪接受体区域、分支位点、多聚嘧啶区域),因为MET基因变异只要影响到这4个功能区域就会导致MET 14跳突(图4)[5-6]。还要明确14号外显子上第一个和最后一个碱基位点命名(c.2888和c.3028),因为几乎所有的MET 14跳突的命名都是以这两个位点(数字)为基准(MET转录本号:NM_000245)。例如内含子中的突变:c.2888-16_2888-1del和c.3028+3A>G。当然,MET 14跳突的变异命名也因参考的基因转录本不同而异,当你发现c.2942和c.3082为基准的命名时,大概率MET转录本号是NM_001127500.3,若确认属实后,依然适用判读[7]。

 

图片

图4. MET 14跳突功能区域和真实位点检出(综合[6]和[8]研究作图)

 

看得出,这4个功能区位置上大体分为两类:一类是位于14号外显子首末两端经典剪接区域:剪接供体区域和剪接受体区域;另一类是位于13号内含子较深处的的分支位点和多聚嘧啶位点。结合图4展开来说[5-9]:1)剪接供体区域(splice donor, SD):SD位于exon14与intron14交接的剪接区域(c.3028或c.3082前后;剪接供体区域碱基发生突变(c.3028,c.3028+1,c.3028+2,c.3028+3等),或者覆盖该区域的变异(c.3026_c.3028+7del,c.3028_c.3028+3del等)都能导致MET 14跳突发生。其中,外显子内部的c.3027,c.3028对应的氨基酸为p.X1009和p.D1010,看到这种氨基酸的变异可直接判定MET 14跳突。

 

2)剪接受体区域(splice acceptor, SA):SA位于exon14与intron13交接的剪接区域(c.2888或c.2942前后;剪接受体区域碱基发生突变(c.2888-1,c.2888-2、c.2888等),或者覆盖该区域的变异(c.2888-5_2911del,c.2888-14_2888-5del,c.2888-18_2888-6del)等都能导致MET 14跳突发生。其中,c.2888位于MET 14号外显子区域,对应的氨基酸为p.X963。

 

3)分支位点(Branch Site,BS):BS位于13号内含子内部,为14号外显子上游29bp的A碱基位点(c.2888-29),若该位点发生突变或者被其他片段变异所覆盖(c.2888-35_ 2888-17del),可能导致MET 14跳突。

 

4) 多聚嘧啶位点(Poly-pyrimidine tract,PPT):PPT同样位于13号内含子内部,为14号外显子上游9bp至24bp的区域(c.2888-24_2888-9),若MET基因小片段缺失片段覆盖或涉及PPT区域(c.2888-28_2888-14del,c.2888-27_2888-12del),可能导致MET 14跳突。

 

除此之外,位于14号外显子内部的多个错义突变也能致癌,多为MET第1002、1003、1004位氨基酸,但它们并不导致MET 14跳突。所以除了MET 14号外显子跳跃突变外,也有必要进一步确认是否为外显子上激活突变。

 

五、如何快速辨认MET 14跳突?

重点来了,对于报告中即将看到的MET基因突变?先别激动,捋一下MET 14跳突辨认步骤。


为更贴合实际情况,列举几份报告涉及了不同类型的MET 14跳突供参考:

图片

图5. 绘真医学MET 跳突检出报告示例

 

如何快速辨认MET 14跳突?

一看内含子/外显子号,排除13和14之外的变异:

intron 表示内含子,exon为外显子,通常MET变异位于13号内含子(intron 13)/14号外显子(exon 14)/14号内含子(intron 14)上才会导致MET 14跳突,其它内含子/外显子无需考虑!

 

二看位点变异,“数字”是否涉及功能区位点:

这里务必记住两个关键词:c.2888和c.3028(参考转录本:NM_000245)。这是位于c.2888和c.3028位点及周围的变异的标志物。这里只需看变异是不是剪接受体位点SA:c.2888,c.2889,c.2888-1/-2/-3剪接供体位点SD:c.3028,c.3027,c.3028+1/+2/+3,多聚嘧啶位点PPT:c.2888-24_c.2888-9、分支位点BS:c.2888-29当你看到c.2942和c.3082时,先确认转录本,若是NM_001127500.3,可替代c.2888和c.3028的作用,也有用这个转录本的报道[7]。

 

还有很多MET 14跳突都是小片段的缺失/缺失插入(del/indel),以“_”为标志,这些变异区间若覆盖或涉及上述功能位点,也会导致MET 14跳突,例如c.2888-35_ 2888-17del(涉及BS和PPT)、c. 2888-27_2901del(PPT和SA)、c.2888-10_ 2909delinsTCA(SA)或c.3028_ 3028+3del(SD)、c.3028+1_3028+9del(SD)、c.3028_3028+17delinsC(SD)。

 

三看非14跳突变异,14外显子内部致病变异

前面三步是判定MET 14跳突步骤,其它14号外显子内部的1002、1003、1004位氨基酸激活变异通常表述为p.Y1003X、p. R1004X和p.D1002X(X代表不同氨基酸)。再确认这些位点突变来判定非MET 14跳突类型。

 

六、MET 14跳突各类型发生比例如何?

既往研究表明[7.10],MET 14跳突在中国NSCLC患者中的总体比例为1%-2.62%,发生率因病理亚型而异,在腺癌中约为1.0%-2.6%,鳞癌中约为1.5%-4.8%,而在肉瘤样癌中则达到10.5%-31.8%。

 

一项大型临床研究在60244晚期NSCLC患者中检出了1592例MET 14跳突的患者[11],携带了共1599种MET 14跳突不同类型,其中组织和血液的检出率分别为2.4%(1458/60244)和1.8%(134/8975)。不同功能区域的MET 14跳突的突变数量和类型均有差别(图7):5'端剪接供体区域SD(31%)、D1010(22%)、多聚嘧啶序列PT(17%)、5 '端多位点变异(13%)、3 '端多位点变异(12%)、3'端剪接受体SA(2.3%)、Y1003位点(2.3%)和整个外显子缺失(0.44%)。进一步分析发现,在经典剪接3'SA和5'SD位点上,突变类型主要是碱基替换(94%和75%),而14号外显子的PT区域、5多位点和3多位点的突变方式以indel为主。

 

图片图6. 不同区域MET 14跳突在组织和血液样本检出情况[11]

 

因此,MET 14跳突类型多样并且功能区域覆盖广泛,多数变异位于测序难度较大的内含子区域,血液检测可能存在一定的漏检率,精准检出MET 14跳突似乎是一项挑战。

 

 

七、如何精准全面地检测MET 14号外显子跳突?

目前,MET 14跳突的检测方法包括NGS、RT-PCR和Sanger测序,NGS因检测变异类型多、覆盖范围广是NCCN和CSCO指南推荐的检测方法。NGS检测进一步分为DNA水平的测序和RNA水平的测序。2020年哥伦比亚医学中心一项研究用NGS-DNA在644例肺腺癌患者检测到16例 (2.5%)MET 14跳突的患者,而当再使用NGS-RNA检测,结果在DNA检测为阴性的样本中另外检出了9例携带 MET 14跳突的样本。究其原因,发现DNA水平测序未覆盖13号内含子剪切受体位点,导致遗漏部分阳性变异[12]。有研究分析了DNA和RNA检测MET 14跳突结果,发现RNA层面的NGS检测MET 14跳突的检出率为4.2%(17/404),显著高于DNA层面的检出率1.3%(11/856)[13]。在两种方法同时检测的286例样本中,RNA检出10例阳性,其中6例在DNA中并未检出。主要是扩增探针设计范围有限或难以满足高质量测序,无法捕获关键突变位点。表明DNA层面检测MET 14跳突时,需全面考虑是否覆盖所有可能发生区域和类型,测序探针的合理设计尤为重要。

 

图片图7. NGS-DNA和NGS-RNA检测MET 14跳突的区别[12]

 

由于MET跳突多发生于DNA内含子区域,而内含子区域涵盖大量的重复或高GC序列导致NGS-DNA测序不佳。基于RNA水平的NGS检测MET 14跳突可能比DNA水平更加全面,但RNA检测需要严苛的组织保存和提取条件,易降解性也是限制NGS-RNA检测的痛点。所以,NGS-DNA和NGS-RNA检测MET 14跳突各具优劣势,最佳方式采取优势互补的双组学检测相信能全面、精准地检出MET 14跳突。

 

八、不同检测平台对MET 14跳突的检测结果有差异吗?

MET 14跳突挑战不仅存在于不同测序技术之间,其实不同的NGS平台在MET 14跳突检测时也会出现不同的检测结果,我们尤其需要关注的是假阳性。2021年权威杂志《Journal of Thoracic Oncology 》就发表一篇研究报道[14]。

 

研究采用Oncomine DxTT(FDA批准的NGS肺癌伴随诊断产品,Ion Torrent平台),在50例样本中检出26例为MET 14跳突阳性,24例为阴性。后续又使用了Archer MET(日本获批的MET抑制剂Tepotinib的伴随诊断试剂盒,Illumina MiSeq平台[15])和RNA层面的RT-PCR技术对这50例样本进行验证,确认出Oncomine DxTT的结果中有8例样本为假阳性,而Archer MET和RT-PCR所有检测结果是一致的。分析发现这8例样本中有3例为测序深度太少导致假阳性,5例是由于14号外显子剪接供体区域存在的重复碱基TTTT导致Ion Torrent测序的假阳性(4个T测成3个T)(图9),由于Ion Torrent平台测序这段重复碱基时少识别一个T,表现为剪接供体移码突变,误认为是MET 14跳突“阳性”。这也是目前Ion Torrent平台测序检测序列准确性的技术瓶颈[16]。

 

图片图8. 三种平台检测MET 14跳突结果及Oncomine DxTT检出差异性原因[14]

 

目前,临床上对MET14跳突的检测报道多集中于假阴性结果,而该研究证明了假阳性也客观存在。我们发现,存在多种影响MET 14跳突测序的不确定因素,包括基因层面的,技术层面的等等,这也是MET 14跳突检测在不同平台或样本间存在广泛差异性的原因。不同的检测平台和技术各具优势,相信随着技术的完善,会有更多的准确性高,覆盖面全的MET 14跳突技术和产品被挖掘。

 

 

九、MET 14跳突的肺癌患者有哪些靶向药物?

现阶段,克唑替尼、Capmatinib、Tepotinib赛沃替尼等多种MET抑制剂已经在MET 14跳突的NSCLC患者中取得了良好的抗肿瘤效果[17]。近两年,Capmatinib和Tepotinib陆续获得FDA批准上市,而赛沃替尼也于2021年被NMPA批准上市,中国MET 14跳突患者迎来了首款获批的MET抑制剂。目前,MET 14跳突检测已被纳入国内外各大指南的推荐用以指导靶向治疗。最新NCCN非小细胞肺癌临床实践指南(2022.v3版)推荐转移性NSCLC患者检测MET 14跳突,阳性患者一线治疗可选择Capmatinib、Tepotinib或克唑替尼(特殊情况下)。

 

图片

图9. 2022 v3版NCCN指南推荐MET 14跳突患者一线治疗

 

CSCO指南对于MET 14跳突阳性NSCLC患者的一线治疗,III级推荐Capmatinib、Tepotinib;对于未经靶向治疗的后线患者,II级推荐赛沃替尼,III级推荐Capmatinib、Tepotinib的治疗。

 

图片

图10. CSCO指南推荐MET 14跳突患者一线及后线治疗

 

除此之外,《非小细胞肺癌分子病理检测临床实践指南2021版》已明确将MET 14跳突与EGFR、ALK、ROS1同等列为NSCLC患者的必检基因[18]。随着MET抑制剂的陆续获批,不仅是MET 14跳突,包括MET扩增都已然成为NSCLC的靶向治疗领域的研究热点,为更好地了解临床前沿进展,在此为您找来MET抑制剂在MET变异的NSCLC患者中的最新临床研究[19]。

 

图片

图11. 不同MET抑制剂在MET突变患者中的临床研究[19]

 

精准治疗,检测先行!在推行肿瘤靶向治疗的今天,全面准确的基因检测结果是患者能否获益于靶向治疗的先决条件,期待会有更多新兴的MET基因检测平台和方法被开发,实现MET基因突变的肿瘤患者更多地获益于分子检测和药物治疗。

 

参考文献:[1]  A C D , Frédéric Leprêtre PhD b,  Fabienne Escande A , et al. Optimization of Routine Testing for MET Exon 14 Splice Site Mutations in NSCLC Patients[J]. Journal of Thoracic Oncology, 2018, 13( 12):1873-1883.[2] A, Drilon. MET Exon 14 Alterations in Lung Cancer: Exon Skipping Extends Half-Life[J]. Clinical Cancer Research, 2016, 22(12).[3]  Subramanian J, Tawfik O. Detection of MET exon 14 skipping mutations in non-small cell lung cancer: overview and community perspective. Expert Rev Anticancer Ther. 2021 Aug;21(8):877-886.[4] den Dunnen JT. Describing Sequence Variants Using HGVS Nomenclature. Methods Mol Biol. 2017;1492:243-251.[5] Shah R ,  D  Alex,  Xu Z . MET Exon 14 Skipping Alterations in Non-small Cell Lung Carcinoma—Current Understanding and Therapeutic Advances[J]. Oncology & Hematology Review (US), 2021, 16(2):100.[6] Fujino T ,  Suda K ,  Mitsudomi T . Lung Cancer with MET exon 14 Skipping Mutation: Genetic Feature, Current Treatments, and Future Challenges[J]. Lung Cancer: Targets and Therapy, 2021, Volume 12:35-50.[7] Tong JH, Yeung SF, Chan AW, et,al . MET Amplification and Exon 14 Splice Site Mutation Define Unique Molecular Subgroups of Non-Small Cell Lung Carcinoma with Poor Prognosis. Clin Cancer Res. 2016 Jun 15;22(12):3048-56.[8] MET Exon 14 Mutations in Non-Small-Cell Lung Cancer Are Associated With Advanced Age and Stage-Dependent MET Genomic Amplification and c-Met Overexpression[J]. Journal of Clinical Oncology, 2016.[9] Tong JH, Yeung SF, Chan AW, Chung LY, Chau SL, Lung RW, Tong CY, Chow C, Tin EK, Yu YH, Li H, Pan Y, Chak WP, Ng CS, Mok TS, To KF. MET Amplification and Exon 14 Splice Site Mutation Define Unique Molecular Subgroups of Non-Small Cell Lung Carcinoma with Poor Prognosis. Clin Cancer Res. 2016 Jun 15;22(12):3048-56. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-2061. Epub 2016 Feb 4. PMID: 26847053.[10]  Baihua Zhang, Yu Xia, Jiujin Zhang, Jin Yu, Min Chen, Wei Yao, Juan Zhao, Jiqiang He, Tony S. K. Mok, and Kai Wang .Characterization of MET exon 14 skipping in Chinese non-small cell lung cancer (NSCLC) patients. Journal of Clinical Oncology 2020 38:15_suppl, e21525-e21525[11] Lee JK, Madison R, Classon A, Gjoerup O, Rosenzweig M, Frampton GM, Alexander BM, Oxnard GR, Venstrom JM, Awad MM, Schrock AB. Characterization of Non-Small-Cell Lung Cancers With MET Exon 14 Skipping Alterations Detected in Tissue or Liquid: Clinicogenomics and Real-World Treatment Patterns. JCO Precis Oncol. 2021 Aug 25;5:PO.21.00122.[12]  Jurkiewicz M ,  Saqi A ,  Mansukhani M M , et al. Efficacy of DNA versus RNA NGS-based Methods in MET Exon 14 skipping mutation detection[J]. Journal of Clinical Oncology, 2020, 38(15_suppl):9036-9036.[13]  Davies,  Kurtis D , Lomboy, et al. DNA-Based versus RNA-Based Detection of MET Exon 14 Skipping Events in Lung Cancer[J]. Journal of Thoracic Oncology, 2019, 14( 4):737-741.[14]  Teishikata T, Shiraishi K, Shinno Y, Kobayashi Y, Kashima J, Ishiyama T, Yoshida T, Mori T, Yatabe Y. An Alert to Possible False Positives With a Commercial Assay for MET Exon 14 Skipping. J Thorac Oncol. 2021 Dec;16(12):2133-2138.[15]  Yatabe, Yasushi & Goto, Koichi & Matsumoto, et,al. METex14 Skipping Testing Guidance for Lung Cancer Patients: The Guidance from the Biomarker Committee, the Japan Lung Cancer Society. Haigan. 61. 361-370. 10.2482/haigan.61.361.[16] Carapito R, Radosavljevic M, Bahram S. Next-generation sequencing of the HLA locus: methods and impacts on HLA typing, population genetics and disease association studies. Hum Immunol. 2016;77:1016–1023.[17] Shah R ,  D  Alex,  Xu Z . MET Exon 14 Skipping Alterations in Non-small Cell Lung Carcinoma—Current Understanding and Therapeutic Advances[J]. Oncology & Hematology Review (US), 2021, 16(2):100.[18] 中华医学会病理学分会, 国家病理质控中心, 中华医学会肿瘤学分会肺癌学组,等. 非小细胞肺癌分子病理检测临床实践指南(2021版)[J]. 中华病理学杂志, 2021, 50(4):10.[19]  Hamilton G, Rath B. Met inhibitors in the treatment of lung cancer: the evidence to date. Expert Opin Pharmacother. 2022 Apr 13:1-11.

 

往期推荐

【专家访谈】分化型甲状腺癌的靶向治疗

一例胚系BRCA2突变晚期胰腺癌患者受益于奥拉帕利维持治疗超过4年!

卵巢癌基因检测的常见问题答疑【王者训练营】

● 基因检测预测免疫超进展,谨防免疫治疗“火上浇油”

图片

绘真医学坐落于美丽的金鸡湖畔,处于被称为中国“生物硅谷”的中国-新加坡合作苏州工业园区中心,依托国外顶尖学府归国科学家团队建立起先进的检测与研发平台,配备有国际顶级的软硬件设施、严谨的质量管理体系,以及先进的大数据分析处理系统。

旗下设立苏州绘真医学检验实验室与北京昌科医学检验实验室 ,在苏州和北京分别拥有2700平米和1200平米的临床检测与研发大楼、百余名检测研发人员及覆盖全国的销售网络,全面开展肿瘤、感染性疾病、遗传及代谢性疾病检测,与卫生、疾控部门及各大医院开展广泛合作。

我司具有临床基因扩增资质、Ⅱ级生物安全实验室资质、检验检测机构资质认定(CMA)证书;拥有国外顶尖学府原研专利授权及国外授权专利共计6项,国内发明专利2项,实用新型专利21项,软件著作权23项,合计国内授权专利46项,申请受理中专利85项,并以满分成绩通过2021年卫健委临检中心组织的室间质评和2021年美国CAP权威室间质评(NGSST-A 2021、NGSST-B 2021)。

使命:“智慧赋予希望”!

愿景:“描绘本真,健康护航”!

 

图片
更多产品,欢迎点击绘真医学网站http://www.geno-truthdx.com/客服电话:4000672118客服邮箱:service@geno-truth.com
扫码关注绘真医学专员咨询更多检测服务信息图片

文中图片来源于网络,侵权请联系删除!

文章已于2023-07-06修改